Com a finalidade de desenvolver um protocolo de crioconservação do sêmen do robalo-peva,
Centropomus parallelus, foram realizados, no Instituto de Pesca/SAA-SP, estudos para otimizar a
motilidade e tempo de motilidade espermáticas e a capacidade de fecundação do sêmen. Foram
utilizados 50 reprodutores, oriundos de reprodução artificial, criados em tanque-rede instalado em
ambiente oceânico. O sêmen, diluÃdo em três soluções de Ringer (pH 6,1, 7,8 e 8,2), nas proporções
sêmen:diluente de 1:1, 1:2, 1:3, 1:4 e 1:5, foi congelado em vapor de nitrogênio e, posteriormente,
transferido para nitrogênio lÃquido. A velocidade de congelamento, a concentração do crioprotetor
dimetilsulfóxido (DMSO) e o tempo de equilÃbrio foram, respectivamente, 90 ºCmin-1, 10% e 60
segundos. A capacidade de fecundação foi determinada calculando-se volumes de sêmen, para
obtenção das concentrações 4x104, 1x105, 1,6x105 e 2,2x105 espermatozóides:ovócito. Para desova, as
fêmeas receberam gonadotrofina coriônica humana (hCG), na dose 1 UI/g/peso. Para o sêmen
fresco, a motilidade foi de 100 %, o tempo de motilidade de 464,6±47,56s. Para o sêmen
crioconservado, os melhores resultados foram motilidade de 70,0± 3,94% e tempo de motilidade de
610,8± 9,60s, com o diluente de pH 8,2. Não foram observadas diferenças significativas (p<0,01) em
relação às diferentes proporções sêmen:diluente. Foram obtidas taxas de fecundação (99,0± 0,66%)
iguais (p<0,01) a partir da concentração 1,6x105 espermatozóides:ovócito, indicando que a
crioconservação constituiu-se um recurso importante para estoque de sêmen e controle da
reprodução do robalo-peva.
Aiming to develop semen cryopreservation methods of the fat snook, Centropomus parallelus,
studies were carried out in the Instituto de Pesca-SP, to optimize the sperm motility and motility
time and semen fertilization capacity. Fifty reproducers, originated from artificial reproduction,
were brought up in cages that were set in oceanic environment. The semen, diluted in three
Ringer’s solutions (pH 6.1, 7.8 and 8.2) in the proportions of 1:1, 1:2, 1:3, 1:4 and 1:5, was frozen by
nitrogen vapor and later on, transferred to liquid nitrogen. The cooling rate, the dimethyl sulfoxide
(DMSO) cryoprotector concentration and the equilibration time were 90 °C.min-1, 10% and 60
seconds, respectively. The fertilization capacity was determined by calculating volumes of semen
necessary to obtain the sperm:egg proportion of 4.104, 1.105, 1.6.105 and 2.2.105. Regarding the
spawning eggs, the females received human chorionic gonadotropin (hCG) and 1 IU/g/body
weight. Regarding fresh semen, the motility was 100%, as the motility time was 464.6± 47.56 secs.
For cryopreserved semen, the best results for a 70.0± 3.94% motility and 610.8± 9.60 secs motility
time, using the diluent with an 8.2 pH. No significant differences (p<0.01) were observed regarding
the different semen:diluent proportions. Finally, equal (p<0.01) fertilization rates (99.0± 0.66%)
were obtained from 1.6.105 sperm:egg concentration, indicating that cryopreservation sets itself as
an important resource for semen stocking and the fat snook reproduction control.
